Citometría de flujo: Fundamento, instrumentación y aplicaciones en microbiología clínica

  1. Gabriel Alberto March Rosselló 1
  2. José María Eiros Bouza 2
  1. 1 Hospital Universitario de Valladolid
    info

    Hospital Universitario de Valladolid

    Valladolid, España

    ROR https://ror.org/04fffmj41

  2. 2 Facultad de Medicina. Universidad de Valladolid
Revista:
Revista Electrónica de Biomedicina

ISSN: 1697-090X

Año de publicación: 2012

Número: 3

Páginas: 45-53

Tipo: Artículo

DIALNET GOOGLE SCHOLAR lock_openAcceso abierto editor

Otras publicaciones en: Revista Electrónica de Biomedicina

Resumen

La citometría de flujo (CMF) es una técnica que permite el análisis óptico e individual de diferentes partículas y puede aportar resultados en unos pocos minutos tras la realización de las determinaciones. Son numerosas las aplicaciones de esta técnica a la Microbiología Clínica, que van desde la detección y cuantificación de microorganismos hasta estudios en los que se evalúan diferentes parámetros de la célula microbiana, como por ejemplo pruebas tan importantes como la determinación de la susceptibilidad a los agentes quimioterápicos. En este trabajo se pretende revisar el fundamento y la instrumentación de la CMF incluyendo el analizador de orinas Sysmex UF-1000i (Sysmex Corporation, Kobe, Japón), y las principales aplicaciones de esta técnica en Microbiología Clínica.

Referencias bibliográficas

  • Kumar A, Congeni BL, Nankervis GA. Latex agglutination test for rapid detection of bacterial antigens in body fluids. Ann Clin Lab Sci. 1980;10:377-382.
  • Grif K, Fille M, Wurzner R, Weiss G, Lorenz I, Gruber G, et al. Rapid detection of bloodstream pathogens by real-time PCR in patients with sepsis. Wien Klin Wochenschr. 2012;124:266-270.
  • March GA, Eiros JM. Impacto de la metodología MALDI-TOF en la identificación clínica de agentes infecciosos. Electron J Biomed (revista electrónica) 2012;1:60-65. Disponible en: http://biomed.uninet.edu/2012/n1/march.html.
  • Alvarez-Barrientos A, Arroyo J, Canton R, Nombela C, Sanchez-Perez M. Applications of flow cytometry to clinical microbiology. Clin Microbiol Rev. 2000;13:167-195.
  • Kumar A, Ellis P, Arabi Y, Roberts D, Light B, Parrillo JE, et al. Initiation of inappropriate antimicrobial therapy results in a fivefold reduction of survival in human septic shock. Chest. 2009;136:1237-1248.
  • Kumar A, Roberts D, Wood KE, Light B, Parrillo JE, Sharma S, et al. Duration of hypotension before initiation of effective antimicrobial therapy is the critical determinant of survival in human septic shock. Crit Care Med. 2006;34:1589-1596.
  • Infectious Disease Society of America. Bad bugs, no drugs. As antibiotic discovery stagnates, a public health crisis brews. White paper. Alexandria: Infectious Disease Society of America, 2004; 1-35.
  • Eigner U, Schmid A, Wild U, Bertsch D, Fahr AM. Analysis of the comparative workflow and performance characteristics of the VITEK 2 and Phoenix systems. J Clin Microbiol. 2005;43:3829-3834.
  • Parks DR, Herzenberg LA. Fluorescence-activated cell sorting: theory, experimental optimization, and applications in lymphoid cell biology. Methods Enzymol. 1984;108:197-241.
  • Orfao A, Ruiz-Arguelles A. General concepts about cell sorting techniques. Clin Biochem. 1996;29:5-9.
  • Bonner WA, Hulett HR, Sweet RG, Herzenberg LA. Fluorescence activated cell sorting. Rev Sci Instrum. 1972;43:404-409.
  • Ramani R, Chaturvedi V. Flow cytometry antifungal susceptibility testing of pathogenic yeasts other than Candida albicans and comparison with the NCCLS broth microdilution test. Antimicrob Agents Chemother. 2000;44:2752-2758.
  • Green L, Petersen B, Steimel L, Haeber P, Current W. Rapid determination of antifungal activity by flow cytometry. J Clin Microbiol. 1994;32:1088-1091.
  • Gauthier C, St-Pierre Y, Villemur R. Rapid antimicrobial susceptibility testing of urinary tract isolates and samples by flow cytometry. J Med Microbiol. 2002;51:192-200.
  • Shrestha NK, Scalera NM, Wilson DA, Procop GW. Rapid differentiation of methicillin-resistant and methicillin-susceptible Staphylococcus aureus by flow cytometry after brief antibiotic exposure. J Clin Microbiol. 2011;49:2116-2120.
  • Dye C, Scheele S, Dolin P, Pathania V, Raviglione MC. Consensus statement. Global burden of tuberculosis: estimated incidence, prevalence, and mortality by country. WHO Global Surveillance and Monitoring Project. JAMA. 1999;282:677-686.
  • Pina-Vaz C, Costa-de-Oliveira S, Rodrigues AG. Safe susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis by flow cytometry with the fluorescent nucleic acid stain SYTO 16. J Med Microbiol. 2005;54(Pt 1):77-81.
  • Kirk SM, Schell RF, Moore AV, Callister SM, Mazurek GH. Flow cytometric testing of susceptibilities of Mycobacterium tuberculosis isolates to ethambutol, isoniazid, and rifampin in 24 hours. J Clin Microbiol. 1998;36:1568-1573.
  • Khan MM, Pyle BH, Camper AK. Specific and rapid enumeration of viable but nonculturable and viableculturable gram-negative bacteria by using flow cytometry. Appl Environ Microbiol. 2010;76:5088-5096.
  • Schumacher WC, Storozuk CA, Dutta PK, Phipps AJ. Identification and characterization of Bacillus anthracis spores by multiparameter flow cytometry. Appl Environ Microbiol. 2008;74:5220-5223.
  • Brilha S, Proenca H, Cristino JM, Hanscheid T. Use of flow cytometry (Sysmex) UF-100) to screen for positive urine cultures: in search for the ideal cut-off. Clin Chem Lab Med. 2010;48:289-292.
  • Okada H, Sakai Y, Miyazaki S, Arakawa S, Hamaguchi Y, Kamidono S. Detection of significant bacteriuria by automated urinalysis using flow cytometry. J Clin Microbiol. 2000;38:2870-2872.
  • De Rosa R, Grosso S, Bruschetta G, Avolio M, Stano P, Modolo ML, et al. Evaluation of the Sysmex UF1000i flow cytometer for ruling out bacterial urinary tract infection. Clin Chim Acta. 2010;411:1137-1142.
  • Manoni F, Fornasiero L, Ercolin M, Tinello A, Ferrian M, Hoffer P, et al. Cutoff values for bacteria and leukocytes for urine flow cytometer Sysmex UF-1000i in urinary tract infections. Diagn Microbiol Infect Dis. 2009;65:103-107.
  • Wang J, Zhang Y, Xu D, Shao W, Lu Y. Evaluation of the Sysmex UF-1000i for the diagnosis of urinary tract infection. Am J Clin Pathol. 2010;133:577-582.
  • Okada H, Horie S, Inoue J, Kawashima Y. The Basic Performance of Bacteria Counting for Diagnosis of Urinary Tract Infection Using the Fully Automated Urine Particle Analyzer UF-1000i. Sysmex J Int. 2007;17:95-101.
  • Broeren MA, Bahceci S, Vader HL, Arents NL. Screening for urinary tract infection with the Sysmex UF1000i urine flow cytometer. J Clin Microbiol. 2011;49:1025-1029.
  • Pieretti B, Brunati P, Pini B, Colzani C, Congedo P, Rocchi M, et al. Diagnosis of bacteriuria and leukocyturia by automated flow cytometry compared with urine culture. J Clin Microbiol. 2010;48:3990- 3996.
  • Kadkhoda K, Manickam K, Degagne P, Sokolowski P, Pang P, Kontzie N, et al. UF-1000i flow cytometry is an effective screening method for urine specimens. Diagn Microbiol Infect Dis. 2011;69:130-136.
  • Andreu A, Cacho I, Coira A, Lepe JA. Procedimientos en Microbiología Clínica. Diagnóstico microbiológico de las infecciones del tracto urinario. 2ª Edición (14a), 2010. Disponible en: http://www.seimc.org/documentos/protocolos/microbiologia/
  • Broeren MA, Maas Y, Retera E, Arents NL. Antimicrobial susceptibility testing in 90 min by bacterial cell count monitoring. Clin Microbiol Infect. 2012 Feb 9.
Fuente de los datos: Dialnet